Автор: Пользователь скрыл имя, 01 Ноября 2011 в 12:22, курсовая работа
Цель  работы: изучить возможность создания биочипов для выявления точечных мутаций в геноме ВИЧ-1 в полистироловых планшетах.                                                  
            Задачи  исследования: 
            1. Выбрать участок гена ВИЧ-1, в котором находятся несколько мутаций, которые являются первичными, перекрестными у нескольких АРВ-препаратов и встречаются в наиболее консервативных участках генома;
            2. подобрать праймеры для амплификации выбранного участка гена; 
            3. рассчитать и  синтезировать зонды для выявления выбранных мутаций;
            4. определить оптимальные условия проведения ПЦР;
            5. отработать и сравнить методики гибридизации на полистироловых планшетах и на нитроцеллюлозной мембране (дот-блот).
Введение.	2
Актуальность проблемы.	2
Обзор литературы.	4
История открытия ВИЧ.	4
Таксономическое положение и генетическое разнообразие ВИЧ.	5
Строение ВИЧ.	7
Характеристика генома ВИЧ.	8
Патогенез ВИЧ-инфекции.	11
Диагностика ВИЧ.	14
Лечение ВИЧ-инфекции.	20
Резистентность   к АРВ-препаратам.	22
Методы выявления мутаций, приводящих к формированию резистентности: секвенирование, биочипы.	24
История создания биочипов 	27
Технология биочипов 	27
Принцип работы биочипов.	28
Разновидности биочипов, методики создания биочипов, достоинства и недостатки различных видов биочипов.	29
Материалы и методы.	32
1. Полимеразная цепная реакция.	32
2. Электрофорез в агарозном геле.	34
3. Осаждение ДНК этанолом.	36
4.  Гибридизация на мембране (дот-блот).	37
5.. Гибридизация в полистироловых планшетах	38
Экспериментальная часть.	41
I. Получение фрагмента гена ВИЧ pol методом ПЦР.	41
II. Гибридизация с биотинилированными зондами на мембране (дот-блот).	46
III.Гибридизация с биотинилированными зондами на полистироловых планшетах.	47
Выводы.	54
Список литературы.	55
34. Perelson, A. S., Essunger, P., Cao, Y. et al. Decay characteristics of HIV-1-infected compartments during combination therapy. Nature 387:6629 (1997), 188–91.
35. Piatak M Jr, Saag MS, Yang LC. Et al. High levels of HIV-1 in plasma during all stages of infection determined by competitive PCR. Science. 1993, 259:1749-54.
36. Reinis, M., Vandasova, J., Stankova, M., Linka, M. & Bruckova, M. Human immunodeficiency virus 1 strains resistant to nucleoside inhibitors of reverse transcriptase in isolates from the Czech Republic as monitored by line probe assay and nucleotide sequencing. Acta Virol. 45:5–6 (2001), 279–86.
37. Sato, H., Orenstein, J., Dimitrov, D. & Martin, M. Cell-to-cell spread of HIV-1 occurs within minutes and may not involve the participation of virus particles. Virology 186:2 (1992), 712–24.
38. Schmit, J. C., Ruiz, L., Stuyver, L. et al. Comparison of the LiPA HIV-1RT test, selective PCR and direct solid phase sequencing for the detection of HIV-1 drug resistance mutations. J. Virol. Methods 73:1 (1998), 77–82.
39. Schutten M, van den Hoogen B, van der Ende ME. Development of a real-time quantitative RT-PCR for the detection of HIV RNA in plasma.
40. Sturmer, M., Morgenstern, B., Staszewski, S. & Doerr, H. W. Evaluation of the LiPA HIV-1 RT assay version 1: comparison of sequence and hybridization based genotyping systems. J.Clin. Virol. 25 (Suppl. 3) (2002), 65–72.
41. Vartanian, J. P., Sala, M., Henry, M., Wain-Hobson, S. & Meyerhans, A. Manganese cations increase the mutation rate of human immunodeficiency virus type 1 ex vivo. J.Gen. Virol. 80:8 (1999), 1983–6.
            42. Wu 
L, KewalRamani VN. Dendritic-cell interactions with 
HIV: infection and viral dissemination. Nat 
Rev Immunol. 2006, 
6:859-68.