Отчет по практике

При переглядах в дафній реєструються: розміри (у поділках окулярмікрометра), стан гонад і ембріонів в виводкових камерах, їх число, забарвлення тіла, наявність і колір крапель жиру, наповненість кишечника і коль вмісту. У загиблих і іммобілізованих дафній реєструються симптоми загибелі (тетаніческое скорочення м'язів тулуба, судорожне спорожнення кишечника, побіління ділянок тіла, яєць або ембріонів і т.п.).

Результати дослідів дозволяють в основному якісно судити про характер зміни умов у водоймі. В якості керівництва в першому  наближенні можна використовувати прикладене до методики означальні таблицю, складену на підставі аналізу результатів дослідів з різними речовинами.

Визначальних таблиця  токсичної дії речовин та фізіологічного стану дафній.

1 (2,3) Дафнії гинуть  всі протягом перших 4 діб. Гостре летальное

2 (1,3) Дафнії поступово  гинуть всі або частково в  терміни від 4 до 15 діб. Хронічне  летальное дію - 14

3 (1,2) Дафнії не гинуть  за термін до 15 днів або гинуть  окремі особини. Явної закономірності  в термінах їх загибелі не

4 (5,6,7) У іммобілізованих дафній зникають краплі жиру, забарвлення тіла знижується до 1 балу, спостерігаються (зберігаються) сліди перистальтики кишечника, посмикування м'язів плавальних антен, іноді рідкісні скорочення серця - 8

5 (4,6,7) Дафнії скупчуються біля поверхні води в посудині, забарвлення тіла стає 3м-5м (спостерігається помутніння), загиблі особини або залишаються у поверхневої плівки, або падають на дно; окремі м'язи загиблих дафній здригаються у майже розклалися особин, тулуб у загиблих дафній частоівидвінуто далеко вниз через щілину раковини. Загибель наступала від різкого дефіциту кисню (менше 0,5 мг / л).

6 (4,5,7) Спостерігається помутніння  плазми клітин спочатку в зябрових  відростках ніг, потім всього  тулуба - 12

7 (4,5,6) У дафній спостерігається судорожне скорочення м'язів тулуба, що супроводжується видавлюванням частини яєць або ембріонів з виводкової камери. Іноді при цьому спостерігається судорожне спорожнення кишечника. Дія органічних токсичних речовин з подразнюючою типом дії: ряд циклічних сполук, наприклад феноли, та інші, як формалін, нафтопродукти і т. п.

8 (9) Дафнії спочатку рояться  в одному кутку судини, перекидаються,  потім стають млявими і все  частіше лягають на дно. Фільтрувальний  апарат їх нічим не забитий,  кишечник або порожній, або має сліди вмісту (бали 1 і 2). Число яєць в Виводкові камері скорочується аж до нуля. Розвиток відкладених яєць протікає нормально. Дафнії голодують. Дія води, взятої з олігосапробной ділянки водойми.

9 (8) Фільтрувальний апарат дафній  забитий згустками або слизом, тварини лягають на дно. При штучному обережному звільнення від такого засмічення (препаріровальной голкою) і перенесення в хороші умови дафнія може відновити життєдіяльність повністю і нормально розмножуватися. Часто згустки або нитки спостерігаються і на плавальних антени і на каудальної голці ..................................... ................................................ 10

10 (11) Забито тільки фільтрувальний  апарат. У середовищі міститися  суспензії в кількостях роблять  неможливим функціонування фільтрувального апарату дафній.

11 (10) Забито тільки фільтрувальний  апарат, слизові грудки або нитки  на плавальних антенах і на  каудальної голці. Вода для  досвіду взята з полісапробной  - Мезосапробной ділянки водойми.  Внесено занадто багато корму, особливо коли годують дріжджами.

12 (13) Помутніння плазми наблюдаетя  у іммобілізованих дафній. Дія  хлоридів і сульфатів натрію  і кальцію і сумішей цих  солей.

13 (12) Помутніння плазми зябер  наблюдаетя у ще плаваючих  дафній, які часто лягають на дно, а потім судорожно спливають і знову падають на дно. Часто у таких дафній вже припинено дрожжаніе очі і скорочення серця. Дія солей калію, магнію амонію і важких металів.

14 (15,16,17,18) Дафнії поступово бліднуть, у них зникають краплі жиру, число яєць у виводкових камерах скорочується до 1-2, багато самки стають безплідними. Загибель настає через 5-10 днів але окремі особини живуть і довше. Дафнії скупчуються в одному кутку судини і перекидаються. Вода ля досвіду взята з олігосапробной ділянки водойми. Внесено до досвід дуже мало корму.

15 (14,16,17,18) У дафній різко підвищується  бал забарвлення тіла (4-5), яке  часто стає кілька каламутним, тварини піднімаються до поверхні  судини. Дефіцит кисню в середовищі  порядку 1,5 мг / л.

16 (14,15,17,18) У дафній в плавальних антенах і каудальної голці бактеріальні обростання, бал забарвлення тіла часто підвищується; всі яйця та ембріони в виводкових камерах гинуть, чсато розкладаються до перетворення в суцільну пінисту масу.

Вода для досвіду взята з - Мезосапробной ділянки водойми. Різкий перегодовування дафній.

17 (14,15,16,18) У частини дафній через  різні терміни від початку  досліду спостерігається судорожне  скорочення м'язів тулуба і  видавлювання частини яєць з  виводкової камери. Одні яйця  розвиваються неправильно, інші яйця гинуть і скидаються при линьки зі шкіркою (еквузіем).

Дія хронічних доз ряду циклічних  сполук типу фенолів, нафтопродуктів, інсектицидів і т. п.

18 (14,15,16,17) У дафній відмирає частина  яєць в Виводкові камері. Значна  частина обметаної молоди тут же гине. Перед загибеллю дещо знижується інтенсивність забарвлення тіла. Дія солей важких металів.

19 (20,21) Інтенсивність розмноження  дафній знижується, середнє число  яєць на самку 3-7. Дафнії бліднуть (1-2 бали), зникають краплі жиру. Знижений наповнення кишечника - 22

20 (19,21) Забарвлення тіла дафній  помірна (2-3 бали) Краплі жиру є.  Наповнення кишечника 4-5 балів.  Середня інтенсивність розмноження  18-40 яєць на самку - 24

21 (19,20) Забарвлення тіла дафній  яскрава (4-5 балів) - 27

22 (23) Випадків загибелі яєць в виводкових камерах немає. Вода для дослідів взята з олігосапробной-Мезосапробной ділянки водойми. У досліди вноситься не достатньо корму.

23 (22) В виводкових камерах частина  яєць гине (яйця іноді помітно  збільшуються в розмірах) і часто в виводкових камерах одночасно присутні яйця і зародки. Дія невеликих концентрацій солей важких металів. Іноді - це дія погіршення умов середовища і причини неясні.

24 (25,26) У виводкових камерах всі  яйця розвиваються нормально.  Іноді на Дафна з'являються епібіонти з водоростей (особливо в дослідах з водою з природних водойм, взятої в літній час. Вода для досвіду взята з - Мезосапробной ділянки водойми. В досвід внесено оптимальну кількість корму.

25 (24,26) У дафній у виводкових  камерах частина яєць гине і припиняє розвиватися, або частина їх розвивається без линьок ембріонів. Після вимету нормально розвиненої молоди такі яйця скидаються на дно посудини, частина їх залишається в виводкових камерах скинутих шкурок. Дія невеликих концентрацій циклічних сполук. У лабораторних дослідах може бути наслідком того, що Дафна в корм дається пожовкла культура водоростей.

26 (24,25) У дафній відмирає частина яєць у виводкових камерах. На Дафна обростання з бактерій, грибків і сувоек. Іноді резорбція яєць в в гонадах. Вода для досвіду взята з - Мезосапробной ділянки водойми. Невеликий перегодовування.

27 (28) обростання на  Дафна немає, може навіть бути досить багато крапель жиру. Функції розмноження не порушені. У середовищі знижений вміст розчиненого кисню (2-3 мг / л).

 

Б Лабораторія досліджень стійкості об’єктів довкілля

1. Загальна характеристика

Лабораторія досліджень екологічної  стійкості об'єктів довкілля УкрНДІЕП створена в 1983 р. для розв’язання науково-технічних задач  в області охорони і раціонального використання водних ресурсів.

Діяльність лабораторії проходить  у рамках напрямку «Науково-методичне  забезпечення екологічної стійкості  об'єктів навколишнього середовища й екологічного менеджменту».

Співробітники лабораторії виконали більш 100 науково-дослідних робіт.

На теперішній час у числі  співробітників лабораторії 2 канд. біол. наук, 1 канд. хім. наук, 1 канд. техн. наук.

Співробітники лабораторії брали участь у міжнародних симпозіумах, з'їздах, наукових конференціях, опубліковано більш 300 наукових праць.

Завідуючий лабораторією канд. біол. наук Васенко Олександр Георгійович

2. Основні напрямки діяльності

1. Розробка основ державної екологічної політики, спрямованої на підтримку екологічної стійкості об'єктів навколишнього середовища.

2. Розробка наукових основ екологічного  управління охороною вод річкових  басейнів і водогосподарчих комплексів. Методичне забезпечення і проведення  екологічного моніторингу водних об'єктів.

Основна наукова діяльність лабораторії  спрямована на рішення таких задач:

1. Оцінка якості вод річкових басейнів з використанням методології екологічного нормування.
2. Розробка методології проведення натурних гідрохімічних і гідробіологічних досліджень на водних об'єктах.
3. Наукове обґрунтування і розробка програм екологічного оздоровлення річкових басейнів.

3. Основні виконані роботи

Розроблено такі документи:  Проект Національної програми екологічного оздоровлення басейну Дніпра (1994 р.); Концепція екологічного нормування (1997 р.); проект Закону про екологічний аудит (2000 р.); Концепція і Проект Державної програми екологічного оздоровлення басейну ріки Дністер (2003 - 2004 рр.) й ін.

Співробітники лабораторії брали  участь у міжнародних експедиціях по дослідженню якості вод у басейні р. Дніпро і вивченню екологічного стану трансграничних ділянок річок його басейну. З активною участю фахівців лабораторії розроблялася Національна Програма екологічного оздоровлення басейну Дніпра і поліпшення якості питної води, проводилася комплексна оцінка ходу виконання Національної програми на національному і регіональному рівнях. У рамках цієї найважливішої природоохоронної програми виконувалися роботи з транскордонного аналізу басейну р. Прип'ять і розробка комплексу природоохоронних заходів; розробка системи біомоніторингу як основи екологічного нормування якості вод та ін.

На підставі розробленої методики екологічної оцінки якості вод проведена  оцінка динаміки якості вод річкових басейнів (р. Дніпро за період розробки і реалізації Національної програми, р. Тетерів, р. Дністер й ін.).

Протягом ряду років фахівці  лабораторії проводять роботи з  вивчення екологічного стану водойм комплексного призначення, у тому числі  водоймищ-охолоджувачів ТЕС (виконується екологічний нагляд за станом водойми-охолоджувача і здійснюється моніторинг навколишнього природного середовища в районі розміщення найбільшого енергетичного об'єкта Харківської області - Зміївської ТЕС).

 

Аналізи води, які були проведені в вище розглянутій лабораторії на азот нітратний, азот нітритний, азот амонійний, сульфати, загальна жорсткість, хімічне споживання кисню, ортофосфати.

Технологія проведення аналізу  води:

а) розчинений кисень

Фіксація кисню

У кисневу склянку (~ 300мл) заповнену до країв додаємо:

розчин № 1 - МпЗО / гНгО - 2 мл;

розчин № 2 - йодид калію - 2 мл.

Доливаємо до країв дистильованою  водою і закриваємо на водяний  затвор.

Вимірювання.

Розчиняємо осад 3 мл концентрованої сірчаної кислоти. Активно перемішуємо. Відбираємо в конічну колбу 50 мл проби і тітруем 0,02н.тіосульфатом натрію до світло-жовтого кольору. Додаємо 1 мл крохмалю і тітруем до зникнення синього забарвлення.

Обчислення

 

 

де Т - титр (кількість  тіосульфату, витрачений на титрування проби);

 н - нормальність тіосульфату;

К - поправочний коефіцієнт до титру тіосульфату;

V1 - об'єм проби в склянці (журнал);

V2 - об'єм води, витісненої реактивом.

 б) хімічного споживання кисню

.Перемішуємо пробу не фільтрованої води. |

Відбираємо 2 мл проби і додаємо їх в | пробірку ХСК з реактивами. приливає під кутом в 45 ° по стінку. Закриваємо пробірку і акуратно перемішуємо перевертанням. Гріється! Також готуємо «О» і холосту пробу, узявши замість досліджуваної води дистильовану воду. Нагріваємо реактор ГПК до 140 ° С. ставимо пробірки з пробами, а також холосту пробу «0» і не гріємо. Включаємо таймер на 2 години. Через 2 години реактор вимикаємо і Остуджуємо до 100 ° С. Переставляємо пробірки в штатив і остуджуємо до кімнатної температури. Вимірюємо ХСП на фотометрі RD. Програма 430. Довжина хвилі 420.

в) загальна жорсткість

1. вимірювання

Відбираємо в конічну  колбу 50 мл проби. Додаємо 50 мл дистильованої  води. Додаємо 5 мл аміачного буферного  розчину. Перемішуємо. Додаємо індикатор  еріохром чорний Т (0,1 г). Тітруем трилоном Б до зміни забарвлення з червоною в фіолетову при постійному перемішуванні і по краплях до прояву синього забарвлення.