Генетически модифицированные растения: за и против

 
 Agrobacterium tumefaciens(рис 2) в месте поранения. Для их получения выращивались 7-дневные проростки(рис 3а), хирургической иглой наносилось поранение в область апикальной меристемы(рис 3б).

Рис3 Наглядное представление о ходе in planta стадии в процедуре агробактериальной трансформации клевера лугового        На рану наносили агробактерии(рис 3 г,д,е), которые в результате естественного процесса вертикального переноса генов осуществляли трансформацию оставшихся клеток, способных в возобновлению растения. Процесс трансформации происходил в ходе совместного культивирования в течение 2-х суток(рис 3ж,з), после чего проростки отмываются от агробактерий и высаживаются в субстрат.

    Через месяц  растения сформировали 2-3 листка. В это время мы провели обработку листьев гербицидом.  

Рис. 4. Внешний вид листовой пластинки чувствительных (а) и устойчивых к действию гербицида (BASTA).

Табл. 1. Тестирование растений клевера красного на устойчивость к BASTA.

    Вывод: были отобраны растения клевера красного, устойчивые к действию BASTA в гербицидной концентрации, растения будут использованы в селекционном процессе для создания сортов с новыми свойствами. 
 
 

    ЛИТЕРАТУРА 

1. Абдеев  Р.М., Голденкова И.В., Мусийчук К.А., Пирузян  Э.С. Изучение свойств термостабильной целлюлазы CelE Clostridium thermocellum с целью экспрессии в растениях. Биохимия. 2001, том. 66, вып. 7, с. 991-998.
2. Bayer E.A., Chanzy H., Lamed R., Shoham Y. Cellulose, cellulases and cellulosomes. Curr. Opin. Struct.Biol. 1998. Vol. 8., p. 548-557.
3. Boisset C., Chanzy H., Henrissat B., Lamed R., Shoham Y.,  Bayer E.A. Digestion of crystalline cellulose substrates by the Clostridium thermocellum cellulosome: structural and morphological aspects. Biochem. 1999.  Vol. 340. P. 829-835.,
4. Shoham Y., Lamed R., Bayer E.A. The cellulosome concept as an efficient microbial strategy for the degradation of insoluble polysaccharides Trends Microbiol., Vol. 7 P. 275-281.
5. Ebel J., Mithofer A. Early events in the elicitation of plant defence. Planta. 1998. Vol. 20, p. 335-348
6. Grenier J.,Potvin C., Asselin A. Barley pathogenesis-related proteins with fungal cell wall lytic activity inhibit the growth of yeasts. Plant Physiol. 1993, Vol. 103, P. 1277-1283
7. Gueguen Y.,WilfriedG.B., Voorhorst, Johnvander OostE, WillemM.deVos. Molecular and biochemical characterizationofan endo-1,3-glucanase of the hyperthermophilic archaeon Pyrococcus furiosus. The Journal of biological chemistry. 1997. Vol. 272, No.50, P. 31258-31264
8. Hall J., Hazlewood G.P.,Barker P.J., Gilbert  H.J. Conserved reiterated domains in Clostridium thermocellum endoglucanases are not essential for catalytic activity. Gene, 1988, Vol. 69. P. 29-38
9. Kojima M., Arai Y., Iwase N., Shirotori K., Shioiri H., Nozue M. Development of a simple and efficient method for transformation of buckwheat plants (Fagopyrum esculentum) using Agrobacterium tumefaciens. Biosciences, biotechnology, biochemistry. 2000. 64 (4), p. 845-847.
10. Parrish,F.W., Perlin,A.S. Reese,E.T. Selective enzymolysis of polyyiDglucans and the structure of the polymers. Can.J.Chem. 1960. 38, 2094-2104.
11. Quensberry K.H., Wofford D.S., Smith R.L., Krottje P.A., Tcacenco F. Production of red clover transgenic for neomycin phosphotransferase II using Agrobacterium. Crop science. 1996. 36. 1045-1048.
12. Quesenberry K.H., Smith R.R. Recurrent selection for plant regeneration from red clover tissue culture.  Crop sciences. 1993. 33. 585-589.
13. Smith R.R., Quesenberry K.H. Registration of NewRC red clover germplasm. Crop Science. 1995. 35. 295-295.).
14. Sullivan M.L., Quessenberry K.H. Agrobacterium protocols. Red clover (Trifolium pratense). Methods mol. Biol. Edited by: Wang K. 2006. v. 343. 369-382.
15. Weigel D., Ahn J.H., Blazquez M.A. et all. Activation tagging in Arabidopsis. Plant physiology. 2000. V. 122. p. 1003-1013.